PROTOCOLO PARA LA TOMA DE MUESTRA DE SANGRE EN ANIMALES

IDENTIFICACION DE LA MUESTRAS

Nombre, teléfono del médico veterinario.

*        Nombre, dirección, teléfono y fax del propietario.

*        Nombre del predio.

*         Ubicación: Municipio, vereda, departamento.

*        Nombre del paciente

*         Especie, raza, sexo, edad e identificación o nombre del animal o animales.

*         Sintomatología.

*         Tiempo de evolución de la enfermedad.

*         Tratamiento efectuado si lo hay.

*         Vacunas aplicadas.

*         En caso de necropsia, descripción de hallazgos o lesiones macroscópicas.

*         Tipo de muestra, fecha y hora de la toma.

*         Diagnóstico presuntivo.

*         Observaciones.

MATERIALES.

*        Torniquete, tijeras ,algodón, alcohol.

*        Jeringas: ( 1cc a 10 cc)

*        Agujas: variados calibres

*        Tubos de recogida

*        Plástico / vidrio (con o sin vacio)

*        Tubos Vacutainer con anticoagulante y sin anticoagulante

*        Gradilla

*        Nevera de icopor

*        Guantes

*        Marcadores

*        Cinta

PROTOCOLO PARA LA TOMA DE MUESTRA  DE SANGRE  EN ANIMALES

*        Sitio de punción  : yugular ,  caudal ( grandes animales)

*        El sitio de punción debe estar limpio y libre de patógenos, esto incluye recortar el pelo, lavarlo con jabón, detergente o solución yodada en dos veces y después realizar una limpieza con alcohol.

*        El corte de pelo puede ser indeseable en animales de exhibición por lo que es necesario pedir el consentimiento del dueño, en caso que el corte no sea posible por algún motivo la limpieza debe ser más estricta.

*        La asepsia debe realizarse en sentido contrario al crecimiento del pelo del animal y en forma circular del centro hacia la periferia. Después de la punción el sitio debe dejarse seco, limpio y libre de sangre ya que cualquier humedad o materia orgánica favorece las infecciones

*        Debe estar seco el tubo  o frasco  donde se recolecte la muestra al igual que la aguja o jeringa, se permite el anticoagulante .

*        La punción de la vena debe ser lo mas exacta posible, evitando   traumatismo de tejidos peri vasculares.

*        Evitar  demasiada  fuerza de succión con la jeringa.

*        Obtenida la muestra quitar la  aguja de la jeringa antes de depositar la sangre en el tubo.

*        Invertir  el tubo  o  la jeringa  3 -4 veces  para  la mescla con el anticoagulante.

*        Evitar el calentamiento o enfriamiento  excesivo.

*        Cambiar la muestra hemolisada.

*        En caso de animales deshidratados  se recomienda retirar una mínima cantidad ( 1 gota)  de anticoagulante, con la finalidad de minimizar el factor de dilución .

*        En caso de recolectar muestras para análisis químicos deben remitirse lo mas  pronto posible para evitar  alteraciones en  los procesos enzimáticos, bacterianos u oxidativo.

*        Los frotis  sanguíneo deben   hacerse con sangre  recién extraída, no almacenarse en refrigeración, se debe realizar por duplicado.

TOMA Y ENVÍO DE MUESTRAS PARA UN ESTUDIO  PARASITOLÓGICO

Materiales

Balde

Bolsas plásticas

• Botas Cepillo de cerdas

• Cinta elástica Cinta indicadora de pH

• Cinta para rotular (Enmascarar). Desinfectante

• Formol Frascos de boca ancha

• Guantes de caucho Glicerina tamponada

• Hisopos Jeringas desechables

• Mangas desechables Nariguera

• Pinzas de disección Portaobjetos

• Protocolos Soga o lazo

• Termómetro Termos plásticos

• Tijeras Toallas desechables

• Tubos vacutainer (Tubos al vacio) con y sin anticoagulante

Observación: Es importante estar verificando el estado de los instrumentos y medios de

Conservación para la toma de las muestras.

COPROLÓGICOS

Materiales:

Guante o funda plástica, Formalina 10%;  nevera con hielo.

 Introducir la mano en el recto del animal y estimular mediante masajes el esfínter anal.

• Cuando se haya obtenido la cantidad suficiente de materia fecal de 20 a 40 gramos, el

guante es reversado hacia adentro.

• Si la muestra tardara más de 2 horas en llegar al laboratorio, pasar una parte de la muestra

a un recipiente con formalina al 10% y otra sin formalina, ni refrigeración, especialmente

cuando se desea investigar parásitos pulmonares (identificación de larvas) y coccidias.

• Si la muestra puede llegar al laboratorio en menos de 2 horas, cerrar el guante o la funda.

• Identificar y enviar la muestra refrigerada.

• Cuando se quiera evaluar el estado de infestación de un grupo de animales, deben tomarse

Muestras por edades. En este caso, se recolectaran pequeñas muestras de heces tomadas al azar.

ESTUDIO DE ECTOPARASITOS

Materiales:

 Gaza, glicerina, pinza, algodón, hoja de bisturí, portaobjeto,guantes.pinzas

Procedimiento:

 Utilizando una gasa impregnada en glicerina y sostenida por una pinza, limpiar la zona,separando las costras poco adheridas y las escamas que se encuentren sobre o alrededor de la lesión que se va a investigar.

• Colocar una gota de glicerina o aceite mineral sobre un portaobjetos.

• Hacer un doblez en la piel del animal a nivel del área sospechosa.

• Con la hoja de un bisturí raspar la parte superior del doblez varias veces hasta lograr algo de

sangrado en la zona.

• Transferir el material raspado a la gota de aceite o glicerina colocada sobre el portaobjeto.

• Colocar una laminilla (Cubre objeto) sobre el material a observar, y enviar al laboratorio.

• Tener en cuenta que los raspados se deben hacer cerca de los bordes de las lesiones activas,

evitando incluir costras secas, pelos o lanas.

RECOMENDACIONES PARA EL ESTUDIO CULTIVO MICOLÓGICO EN PELOS

Materiales: Pinzas estériles, papel de aluminio nuevo, guantes, formato de laboratorio, tijeras,

cajas de Pietri y mechero.

• Recolección de la muestra: Después de sujetar al paciente para dicha toma, observe

Cuidadosamente la zona afectada y encontrará que algunos de los pelos se encuentra partidos,

carentes de brillo, seleccione algunos de ellos y con la ayuda de una pinza arránquelos si se

trata de pelos que están infectados en todo su recorrido, seleccione la zona más infectada y

con una pinza arranque algunos de ellos, tome la muestra en papel aluminio, caja de Petri,

séllela con esparadrapo o cinta de enmascarar y envíela al laboratorio.

• La muestra se debe mantener y preservar bien sellada y en un lugar libre de humedad y seco.

• La cantidad de la muestra debe ser representativa de acuerdo al examen solicitado.

• Para la identificación se debe utilizar formatos especificando los datos correspondientes,

es muy importante saber si el paciente ha estado en tratamiento con algún antibiótico

local o sistémico, ya que este puede inhibir el desarrollo fúngico, por lo tanto es necesario

suspenderlo 5 días antes de solicitar el servicio al laboratorio.

• De la recolección y transporte adecuado de las muestras depende el éxito del proceso y

confiabilidad de los resultados.