lunes, 5 de noviembre de 2012
miércoles, 31 de octubre de 2012
PROTOCOLO PARA LA TOMA DE MUESTRA DE SANGRE EN
ANIMALES
IDENTIFICACION DE LA MUESTRAS
Nombre, teléfono del médico veterinario.
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Nombre, dirección, teléfono y fax del
propietario.
*
Nombre del predio.
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Ubicación: Municipio, vereda, departamento.
*
Nombre
del paciente
*
Especie, raza, sexo, edad e identificación o
nombre del animal o animales.
*
Sintomatología.
*
Tiempo
de evolución de la enfermedad.
*
Tratamiento efectuado si lo hay.
*
Vacunas aplicadas.
*
En
caso de necropsia, descripción de hallazgos o lesiones macroscópicas.
*
Tipo
de muestra, fecha y hora de la toma.
*
Diagnóstico presuntivo.
*
Observaciones.
MATERIALES.
*
Torniquete,
tijeras ,algodón, alcohol.
*
Jeringas:
( 1cc a 10 cc)
*
Agujas:
variados calibres
*
Tubos
de recogida
*
Plástico
/ vidrio (con o sin vacio)
*
Tubos
Vacutainer con anticoagulante y sin anticoagulante
*
Gradilla
*
Nevera
de icopor
*
Guantes
*
Marcadores
*
Cinta
PROTOCOLO PARA LA TOMA DE MUESTRA DE SANGRE
EN ANIMALES
*
Sitio de punción : yugular , caudal ( grandes animales)
*
El sitio de punción debe estar limpio y libre de
patógenos, esto incluye recortar el pelo, lavarlo con jabón, detergente o
solución yodada en dos veces y después realizar una limpieza con alcohol.
*
El corte de pelo puede ser indeseable en
animales de exhibición por lo que es necesario pedir el consentimiento del
dueño, en caso que el corte no sea posible por algún motivo la limpieza debe
ser más estricta.
*
La asepsia debe realizarse en sentido contrario
al crecimiento del pelo del animal y en forma circular del centro hacia la
periferia. Después de la punción el sitio debe dejarse seco, limpio y libre de
sangre ya que cualquier humedad o materia orgánica favorece las infecciones
*
Debe
estar seco el tubo o frasco donde se recolecte la muestra al igual que la
aguja o jeringa, se permite el anticoagulante .
*
La
punción de la vena debe ser lo mas exacta posible, evitando traumatismo de tejidos peri vasculares.
*
Evitar demasiada
fuerza de succión con la jeringa.
*
Obtenida
la muestra quitar la aguja de la jeringa
antes de depositar la sangre en el tubo.
*
Invertir el tubo
o la jeringa 3 -4 veces
para la mescla con el
anticoagulante.
*
Evitar
el calentamiento o enfriamiento
excesivo.
*
Cambiar
la muestra hemolisada.
*
En
caso de animales deshidratados se
recomienda retirar una mínima cantidad ( 1 gota) de anticoagulante, con la finalidad de
minimizar el factor de dilución .
*
En
caso de recolectar muestras para análisis químicos deben remitirse lo mas pronto posible para evitar alteraciones en los procesos enzimáticos, bacterianos u
oxidativo.
*
Los
frotis sanguíneo deben hacerse con sangre recién extraída, no almacenarse en
refrigeración, se debe realizar por duplicado.
TOMA Y ENVÍO DE MUESTRAS PARA UN ESTUDIO PARASITOLÓGICO
Materiales
Balde
Bolsas plásticas
• Botas Cepillo de cerdas
• Cinta elástica Cinta indicadora de pH
• Cinta para rotular (Enmascarar). Desinfectante
• Formol Frascos de boca ancha
• Guantes de caucho Glicerina tamponada
• Hisopos Jeringas desechables
• Mangas desechables Nariguera
• Pinzas de disección Portaobjetos
• Protocolos Soga o lazo
• Termómetro Termos plásticos
• Tijeras Toallas desechables
• Tubos vacutainer (Tubos al vacio) con y sin anticoagulante
Observación: Es importante estar verificando el estado de
los instrumentos y medios de
Conservación para la toma de las muestras.
COPROLÓGICOS
Materiales:
Guante o funda plástica, Formalina 10%; nevera con hielo.
Introducir la mano en
el recto del animal y estimular mediante masajes el esfínter anal.
• Cuando se haya obtenido la cantidad suficiente de materia
fecal de 20 a 40 gramos, el
guante es reversado hacia adentro.
• Si la muestra tardara más de 2 horas en llegar al
laboratorio, pasar una parte de la muestra
a un recipiente con formalina al 10% y otra sin formalina,
ni refrigeración, especialmente
cuando se desea investigar parásitos pulmonares
(identificación de larvas) y coccidias.
• Si la muestra puede llegar al laboratorio en menos de 2
horas, cerrar el guante o la funda.
• Identificar y enviar la muestra refrigerada.
• Cuando se quiera evaluar el estado de infestación de un
grupo de animales, deben tomarse
Muestras por edades. En este caso, se recolectaran pequeñas
muestras de heces tomadas al azar.
ESTUDIO DE ECTOPARASITOS
Materiales:
Gaza, glicerina,
pinza, algodón, hoja de bisturí, portaobjeto,guantes.pinzas
Procedimiento:
Utilizando una gasa
impregnada en glicerina y sostenida por una pinza, limpiar la zona,separando
las costras poco adheridas y las escamas que se encuentren sobre o alrededor de
la lesión que se va a investigar.
• Colocar una gota de glicerina o aceite mineral sobre un
portaobjetos.
• Hacer un doblez en la piel del animal a nivel del área
sospechosa.
• Con la hoja de un bisturí raspar la parte superior del doblez
varias veces hasta lograr algo de
sangrado en la zona.
• Transferir el material raspado a la gota de aceite o
glicerina colocada sobre el portaobjeto.
• Colocar una laminilla (Cubre objeto) sobre el material a
observar, y enviar al laboratorio.
• Tener en cuenta que los raspados se deben hacer cerca de
los bordes de las lesiones activas,
evitando incluir costras secas, pelos o lanas.
RECOMENDACIONES PARA EL ESTUDIO CULTIVO MICOLÓGICO EN PELOS
Materiales: Pinzas estériles,
papel de aluminio nuevo, guantes, formato de laboratorio, tijeras,
cajas de Pietri y mechero.
• Recolección de la muestra:
Después de sujetar al paciente para dicha toma, observe
Cuidadosamente la zona afectada y
encontrará que algunos de los pelos se encuentra partidos,
carentes de brillo, seleccione
algunos de ellos y con la ayuda de una pinza arránquelos si se
trata de pelos que están
infectados en todo su recorrido, seleccione la zona más infectada y
con una pinza arranque algunos de
ellos, tome la muestra en papel aluminio, caja de Petri,
séllela con esparadrapo o cinta
de enmascarar y envíela al laboratorio.
• La muestra se debe mantener y
preservar bien sellada y en un lugar libre de humedad y seco.
• La cantidad de la muestra debe
ser representativa de acuerdo al examen solicitado.
• Para la identificación se debe
utilizar formatos especificando los datos correspondientes,
es muy importante saber si el
paciente ha estado en tratamiento con algún antibiótico
local o sistémico, ya que este
puede inhibir el desarrollo fúngico, por lo tanto es necesario
suspenderlo 5 días antes de
solicitar el servicio al laboratorio.
• De la recolección y transporte
adecuado de las muestras depende el éxito del proceso y
confiabilidad de los resultados.
domingo, 21 de octubre de 2012
Toma de Muestra sanguíneas en animales
Una correcta toma de muestras es un paso clave para la obtención de óptimos datos de laboratorio. Este asunto, conocido desde hace décadas en la medicina humana, es ciertamente difícil de lograr en la medicina veterinaria, donde el tamaño de los pacientes y el grado de tolerancia para la manipulación varía enormemente. En esta página, queremos proponer un método estandarizado de toma de muestras en caninos
Nosotros usamos y recomendamos el uso del sistema de aspiracion con vacutainer. Las ventajas son:
- Se reducen al mínimo el riesgo de contaminación de la sangre por el operador y por quien contiene al paciente
- Se puede recoger un volumen adecuado para el análisis principal
- Se eliminan los riesgos de contaminación de las muestras de suero con K3EDTA
- El uso de tubos de vacío permite mantener una buena relación entre la sangre y anticoagulante.
El sistema incluye un adaptador de vacutainer, una aguja, una aguja de mariposa y el tubos tipo Vacutainer. Aquí está una foto de los tubos que usamos para el perfil de base. De izquierda a derecha se puede ver el tubo K3EDTA, dos tubos para la obtención de suero (con acelerador de la coagulación validado que no interfiere en las determinaciones bioquímicas / endocrinológicas) y el tubo con citrato de sodio (tapón de color turquesa). Por último se observa el tubo de la orina.
Debemos recordar que es fundamental que todos los usuarios del laboratorio utilicen en particular el mismo tubo BD Vacutainer por el K3EDTA, que se utiliza en el conteo totalmente automático de glóbulos mediante láser ADVIA. Los tubos que no corresponden a los que se sugirió obliga a una operación de "transferencia" de la muestra que usted debe evitar.
Queremos llamar vuestra atención sobre el tubo que usamos para la obtención de suero y que se observa en la imagen (tapón rojo). Este tubo contiene un acelerador de la coagulación y se puede centrifugar después de 2-3 minutos de la toma de muestra (ver más abajo).
Tenga en cuenta que es indispensable enviar al laboratorio suero ya separado del resto de la sangre. Nunca envíe la sangre entera, a menos que se solicite específicamente. De igual forma, no utilice ningún tubo que contenga un gel separador, puesto que es posible que el gel "capture" algunos analitos y no se garantiza que sea compatible con las pruebas que realizamos.
Definidos los materiales he aquí algunas imágenes comentadas que documentan el uso del sistema vacutainer.
Extracciones de sangre
Partimos de la muestra fue tomada de la vena cefálica. El procedimiento requiere que el perro está en posición de decúbito esternal o sentado. Mueve la cabeza para el lado del miembro de la tasa. Con la otra mano agarrando el antebrazo en el codo, lateral, y mover la vena dorsal, por la compresión.
También la vena safena puede ser punzada para extracción de sangre en perros de talla mediana y grande.
Identificada la vena estamos preparados para utilizar el dispositivo, que una vez más se muestra a continuación.
Y aquí está el sistema
de trabajo: cuando la sangre ha recorrido el prolongador de la aguja
mariposa, conectar el adaptador de vacunainer y, a continuación, coloque
los tubos en secuencia.
Si se realiza la extracción con jeringa es preferible la yugular tanto en perros como en gatos.
.
Gestión de las muestras
Una vez que haya llenado rápidamente los tubos debe ejecutar un frotis en fresco para acompañar el tubo con K3EDTA para la realización del examen hemocromocitometrico.
Los tubos
deben girar tres veces por lo menos. Los dedicados a la producción de
suero se colocan verticalmente. La ventaja de usar los tubos con un
acelerador de la coagulación es la posibilidad de centrifugar las
muestras dentro de los 2-3 minutos de la extracción. Independientemente
del tipo de tubo utilizado, si la centrifugación se retrasa,ocurrirán
graves alteraciones, comenzando por una reducción de azúcar en la
sangre.
En la figura de abajo se puede observar una centrifugadora.
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